Modele de thevenin exercice corrigé

By | February 19, 2019

Les SHR adultes actifs ont été adaptés au tapis roulant pendant 2 semaines et soumis au MET. Les rats ont été anesthésiés (kétamine, 100 mg/kg + xylazine, 20 mg/kg, IP) pour l`implantation d`un kit de perfusion attaché à une mini-pompe osmotique dans le ventricule latéral (kit de perfusion cérébrale 2 + pompe micro-osmotique modèle 1002, Alzet, Cupertino CA, USA) comme précédemment décrits (DeVos et Miller, 2013). Brièvement, des rats ont été placés dans un appareil stéréotaxique (David Kopf, Tujunga CA, USA, incisive bar − 3,3 mm) et après une anesthésie locale (2% de Chloridrate de lidocaïne + 0,04% de Chloridrate de phényléphrine) et d`asepsie (solution d`alcool iodate), le crâne a été exposé et un petit trou ouvert pour l`insertion du kit de perfusion dans le ventricule latéral (1,0 caudale à la Bregma, 1,6 mm latéralement à la ligne médiane, 4,5 mm ventrale à la surface du crâne) (Paxinos et Watson, 2007). Le kit de perfusion a été fixé avec un méthacrylate polymérisant rapide et relié à la mini-pompe osmotique (0,25 μL/h pendant 14 jours) préalablement remplie de sérum physiologique ou d`angiotensine II (Ang II, 50 ng/μL/h) et insérée sous-cutanée dans la région scapulaire. La peau a été suturée; les rats ont été traités avec analgésique plus antibiotique et ont permis de récupérer dans leurs cages individuelles. Formation à l`exercice (T = 50 – 60% de la capacité maximale d`exercice, 1 h/jour) ou le protocole S a commencé le lendemain et a continué pendant encore 13 jours, pendant la période de perfusion active des mini-pompes. Remarquez que 14 séances d`exercices quotidiennes consécutives et une formation de 2 à 3 semaines (Protocole II) représentent un volume similaire de formation, c`est-à-dire qu`elles sont isocaloriques. À la fin des protocoles, les rats ont été anesthésiés et canules. Le lendemain, après des enregistrements hémodynamiques, la moitié de ces rats ont été perfusés avec le FITC + RHO intra-artériellement et les cerveaux ont enlevé 20 min plus tard pour les essais d`immunofluorescence, comme décrit ci-dessus; dans l`autre moitié, les cerveaux ont été rapidement perfusés avec stérile 0,01 M PBS (100 mL, pH 7,4) suivi de 4% paraformaldeyde (400 mL, 20 – 30 mL/min, Daigger Pump, Vernon Hills IL, USA). Les cerveaux ont été enlevés, post-fixés (4 h), cryoprotégés (72 h à 4 ° c), entreposés (− 80 ° c) jusqu`à la transformation et utilisés pour analyser les effets combinés de l`entraînement et de la perfusion d`Ang II sur l`expression des récepteurs et la microglies.

Coefficients modèles pour le modèle PP proposé et le modèle PP basé sur les PTT le matériel d`acquisition de données BIOPAC (MP36) et le système de capture de mouvement VICON ont été reliés à deux ordinateurs distincts pour le fonctionnement et le stockage. Pour la synchronisation, un interrupteur à bouton-poussoir SS10L a été raccordé au canal 1 de l`unité MP36 (comme illustré à la Fig. 1c). Les sujets ont été invités à saisir l`interrupteur à la main avec le pouce reposant sur le bouton poussoir. Deux marqueurs supplémentaires ont été placés sur le pouce des sujets (ongle et OS métarpien). Après avoir démarré l`enregistrement sur les deux ordinateurs, on a demandé aux sujets d`appuyer trois fois sur le bouton-poussoir avec le pouce. En appuyant sur le bouton, un signal de 5 mV est généré. Le signal revient à 0 V lorsque le bouton est relâché.

Simultanément, le mouvement vers le bas du pouce est enregistré par le système VICON. Pour la synchronisation grossière, le décalage temporel entre le signal du bouton-poussoir du système MP36 et le mouvement du pouce descendant correspondant du système VICON est déterminé et le décalage est corrigé.

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